![]()
Индолил-3-масляная кислота
Индолил-3-масляная кислота или ИМК (1Н-Индол-3-бутановая кислота, ИБК) твердое кристаллические вещество от белого до бледно-желтого цвета с молекулярной структурой кристаллического твердого вещества, с молекулярной формулой C12H13NO2. Температура плавления составляет 125 °C (при атмосферном давлении). При дальнейшем нагревании разлагается (до кипения).
| Индолил-3-масляная кислота | |
|---|---|
 | |
| Общие | |
| Хим. формула |
|
| Физические свойства | |
| Молярная масса |
|
| Термические свойства | |
| Температура | |
| • плавления |
|
| Классификация | |
| Рег. номер CAS |
|
| PubChem |
|
| Рег. номер EINECS |
|
| SMILES | |
| InChI | |
| RTECS |
|
| ChEBI |
|
| ChemSpider |
|
| Приведены данные для стандартных условий (25 °C, 100 кПа), если не указано иное. | |
 Медиафайлы на Викискладе |
ИМК является фитогормоном из класса ауксинов; входит в состав стимуляторов корнеообразования в ряде коммерческих садовых средств.
![]()
![]()
Фитогормон![]()
Править
Поскольку ИМК не растворима в воде, её обычно растворяют в 75% или чистом этаноле.
Для использования в качестве стимулятора роста растений спиртовой раствор разводят в воде до концентрации 1—5%.
ИМК также доступна в виде соли (например, калиевой)[
какой?], которая хорошо растворяется в воде.
Раствор следует хранить в прохладном, темном месте.
Соединение получают исключительно синтетическими методами; однако, сообщалось, что комплекс был выделен из листьев и семян кукурузы и других видов. Показано, что в кукурузе ИМК синтезируется in vivo, при этом ИУК и ряд других соединений являются предшественниками.[2] Также известно, что ИМК может быть выделена из представителей рода Salix (ива).[3]
![]()
![]()
Культура тканей растений![]()
Править
В культуре растительных клеток ИМК и другие ауксины используются, чтобы инициировать образование корней (ризогенез) в пробирке, в ходе называется микроклонального размножения. Микроклональное размножение растений представляет собой процесс использования эксплантов растений и воздействия на них таким образом, чтобы инициировать рост дифференцированных или недифференцированных клеток. В частности для инициации клеточных делений и образования клеточной массы (каллус) используются фитогормоны (цитокинины, такие как кинетин; ауксины, как ИМК). Формирование каллуса часто используется в качестве первого шага в процессе микроклонального размножения. После формирования каллуса инициируют образование других тканей; так например, для инициации образования корней требуется воздействие повышенных концентраций ауксинов. Образование корней из экспланта со стадией каллуса обозначается как непрямой органогенез; с другой стороны формирование корней непосредственно из экспланта представляет собой пример прямого органогенеза.[4]
В исследовании проведенном на чайном кусте (Camelia sinensis) сравнивалась эффективность корнеобразования при действии трёх различных ауксинов: ИМК, ИУК и НУК. По результатам работы было показано, что для данного вида ИМК является наиболее сильным стимулятором ризогенеза по сравнению с другими ауксинами.[5] Подобный результат согласуется с исследованиями для других видов, в связи с этим ИМК чаще других ауксинов используется для стимуляции корнеообразования.[6]
![]()
![]()
Механизм действия![]()
Править
Точный механизм действия ИМК не известен, ряд генетических данных показывает, что ИМК в растении превращается в ИУК в ходе реакции близкой к β-окислению жирных кислот. Предполагается, что ИМК представляет собой запасную форму ИУК в растении.[7] Другие факты говорят о том, что ИМК не конвертируется в ИУК, а непосредственно связывается с рецепторами и обеспечивает эффекты независимо от ИУК.[2]
![]()
![]()
Ссылки![]()
Править
↑
Bradley J., Williams A., Andrew S.I.D. Lang Jean-Claude Bradley Open Melting Point Dataset // Figshare
— 2014. — doi:10.6084/M9.FIGSHARE.1031637.V2
↑ 1 2
Ludwig-Müller, J.. Indole-3-butyric acid in plant growth and development, Plant Growth Regulation.
↑
William G. Hopkins; William G. Hopkins. Introduction to plant physiology (неопр.). — Wiley, 1999. — ISBN 978-0-471-19281-7.
↑
Bridgen, M.P, Masood, Z.H. and Spencer-Barreto, M.. A laboratory exercise to demonstrate direct and indirect shoot organogenesis from leaves of Torenia fournieri., HortTechnology, С. 320–322.
↑
Rout, G.R.. Effect of auxins on adventitious root development from single node cuttings of Camellia sinensis (L.) Kuntze and associated biochemical changes, Plant Growth Regulation.
↑
Pooja Goyal. Micropropagation of Pithecellobium dulce (Roxb.) Benth—a multipurpose leguminous tree and assessment of genetic fidelity of micropropagated plants using molecular markers, Physiol Mol Biol Plants.
↑
Zolman, B.K., Martinez, N., Millius, A., Adham, A.R., Bartel, B. Identification and characterization of Arabidopsis indole-3-butyric acid response mutants defective in novel peroxisomal enzymes, Genetics.