Это не официальный сайт wikipedia.org 01.01.2023

FADD — Википедия

Fas-ассоциированный белок с доменом смерти (англ. Fas-associated protein with death domain, сокр. FADD) или белок, взаимодействующий с доменом смерти Fas-рецептора, также называемый MORT1 — адапторный белок, кодируется одноимённым геном FADD, у человека он локализован на длинном плече (q-плече) 11-ой хромосомы[4].

FADD
FADD based on pdb file 2GF5.gif
Доступные структуры
PDBПоиск ортологов: PDBe RCSB
Идентификаторы
СимволыFADD, GIG3, MORT1, Fas associated via death domain, IMD90
Внешние IDsOMIM: 602457 MGI: 109324 HomoloGene: 2836 GeneCards: FADD
Ортологи
ВидЧеловекМышь
Entrez
Ensembl
UniProt
RefSeq (мРНК)

NM_003824

NM_010175

RefSeq (белок)

NP_003815

NP_034305

Локус (UCSC)Chr 11: 70.2 – 70.21 Mbn/a
Поиск PubMed[2][3]
Викиданные
Править (человек)Править (мышь)

FADD является адапторным белком, который связывает членов суперсемейства рецепторов фактора некроза опухоли, таких как Fas-рецептор, с прокаспазами 8 и 10 , с образованием сигнального комплекса, вызывающего смерть (DISC) во время апоптоза. Помимо своей наиболее известной роли в апоптозе, FADD также играет роль в других процессах, включая пролиферацию клеток, регуляцию клеточного цикла и эмбриональное развитие.

СтруктураПравить

FADD — это белок с молекулярной массой 23 кДа, состоящий из 208 аминокислотных остатков[5]. Он содержит два основных домена: C-концевого домена смерти (DD) и N-концевого эффекторного домена смерти (DED). Каждый домен, хотя и имеет очень небольшое сходство последовательностей, структурно сходен между собой, каждый из которых состоит из 6 α-спиралей[6][7]. DD FADD связывается с рецепторами, такими как рецептор Fas, расположенного на плазматической мембране, посредством взаимодействия их доменов смерти[8]. Взаимодействия между доменами смерти представляет собой электростатические взаимодействия с участием 2 и 3 α-спиралей 6-ти спирального домена[9]. DED связывается с DED внутриклеточных молекул, таких как прокаспаза 8[10]. Считается, что такое взаимодействие происходит за счёт гидрофобных групп[7].

ФункцииПравить

Внешний апоптозПравить

После стимуляции Fas-лигандом (FasL) рецептор Fas тримеризуется. Многие рецепторы, включая Fas, содержат цитоплазматический DD и поэтому называются рецепторами смерти. FADD связывается с DD этой тримерной структуры посредством своего домена смерти[8], что приводит к демаскировки с DED FADD и последующему рекрутированию прокаспазы 8 и 10 посредством взаимодействия между DED FADD и прокаспаз соответственно. Данные взаимодействия создают комплекс, известный как сигнальный комплекс, вызывающий смерть (DISC)[11]. Прокаспазы 8 и 10 известны как каспазы-инициаторы. Это неактивные молекулы, но когда они находятся в непосредственной близости с другими прокаспазами того же типа происходит аутокаталитическое расщепление остатка аспартата в их собственных структурах, в результате чего происходит активация белка. Этот активированный белок может затем расщеплять и активировать дальнейшие каспазы, инициируя каспазный каскад[12]. Активированные каспазы могут продолжать расщеплять внутриклеточные белки, таких как ингибитор каспазо-активированной ДНКазы (ICAD), что в конечном итоге приводит к апоптозу клетки[13].

Связывание TRAIL с рецепторами смерти 4 и 5 (DR4 и DR5) может привести к апоптозу по тому же механизму[14].

Апоптоз также может быть вызван связыванием лиганда с рецептором фактора некроза опухоли 1 (TNFR1); однако механизм, с помощью которого это происходит, немного сложнее. Другой DD-содержащий адапторный белок, названный TRADD, наряду с другими белками связывается с активированным TNF1R, образуя так называемый комплекс I. Это приводит к активации пути NF-κB, который способствует выживанию клеток. Этот комплекс затем интернализуется, и FADD связывается с TRADD посредством взаимодействия DD двух адапторных белков, образуя так называемый комплекс II. FADD снова рекрутирует прокаспазу 8, которая инициирует каспазный каскад, приводящий к апоптозу[15].

 
Диаграмма показывает внешний апоптотический путь, посредством которого рецептор Fas (FasR) на одной клетке стимулируется лигандом Fas (FasL) на другой клетке, рекрутируя FADD в FasR посредством взаимодействия между доменами смерти (DD) обеих молекул. Прокаспаза 8 рекрутируется в FADD и взаимодействует посредством эффекторных домены смерти (DED). Это приводит к расщеплению и активации прокаспазы 8, образуя каспазу 8, которая продолжает расщеплять и активировать другие каспазы, такие как прокаспаза 3, далее происходит инициация каспазного каскада, который приводит к гибели клеток.

НекроптозПравить

FADD также играет роль в регуляции некроптоза, процесса, требующего серин/треонин киназы, RIPK1 и RIPK3. Активированная каспаза 8 расщепляет эти киназы, ингибируя некроптоз. Поскольку активация каспазы 8 требует FADD для того, чтобы молекулы прокаспазы 8 находились в непосредственной близости друг к другу, облегчая их активацию, FADD необходим для негативной регуляции некроптоза. В соответствии с этим, клетки имеющий дефицит FADD подвержены некроптозу, поскольку они не способны рекрутировать и активировать прокаспазу 8. FADD также может напрямую связываться с RIPK1 и RIPK3, однако важность этого взаимодействия в настоящее время неясна[13].

Аутофагическая гибель клетокПравить

Аутофагия — это процесс, который позволяет клеткам выживать в стрессовых условиях, но также может привести к их гибели.

Используя DD, FADD взаимодействует с ATG5, белком, участвующим в аутофагии. Было показано, что данное взаимодействие имеет важное значение для аутофагической гибели клеток, которая индуцируется гамма интерфероном (IFN-γ)[16] .

Напротив, было также обнаружено, что он ингибирует аутофагическую гибель клеток и, следовательно, способствует выживанию клеток. FADD связывается с ATG5 в комплексе, который также содержит ATG12, каспаза 8 и RIPK1. Образование этого комплекса стимулируется аутофагической передачей сигналов. Затем каспаза 8 расщепляет RIPK1, приводя к ингибированию этой передачи сигналов, тем самым ингибируя гибель клеток[17].

Эмбриональное развитиеПравить

Нокаут FADD у эмбрионов мышей является летальным, показывая роль FADD в эмбриональном развитии. Считается, что это связано с ненормальным развитием сердца[18]. Данная патология в развитии сердца может быть связана с FADD-зависимой регуляцией пути NF-κB[19].

FADD также играет роль в развитии глаз рыбок Данио-рерио[20].

Регуляция клеточного циклаПравить

Считается, что FADD играет роль в регуляции клеточного цикла Т-лимфоцитов. Эта регуляция зависит от фосфорилирования FADD на остатке серина 194, которое осуществляется казеинкиназой 1a (CKIα). Данная фосфорилированная форма FADD обнаруживается главным образом в ядре, и содержание фосфорилированной FADD значительно увеличивается в фазе G2 клеточного цикла по сравнению с фазой G1, где можно обнаружить только очень мало. Поскольку FADD обнаружен у митотического веретена во время G2, было предложено опосредовать переход G2/M, однако механизм, с помощью которого он это делает, пока неизвестен[21].

Пролиферация лимфоцитовПравить

FADD необходим для пролиферации Т-клеток, когда рецептор Т-клеток стимулируется антигеном[22]. Напротив, FADD не влияет на пролиферацию B-клеток, вызванную стимуляцией B-клеточного рецептора. Однако он необходим для пролиферации В-клеток, вызванной стимуляцией TLR3 и TLR4[23].

ВоспалениеПравить

Активация передачи сигналов ядерного фактора каппа B (NF-κB) приводит к транскрипции различных провоспалительных цитокинов, а также антиапоптотических генов. Было обнаружено, что передача сигналов NF-κB ингибируется в FADD-дефицитных клетках после стимуляции рецепторов TNFR1 или Fas. Это говорит о роли FADD в активации пути NF-κB. И наоборот, FADD также играет роль в ингибировании этого пути. Обычно после стимуляции рецепторов TL4 или IL-1R1 белок-адаптер, MyD88, рекрутируется на плазматическую мембрану, где связывается с киназой, связанной с рецептором IL-1 (IRAK), посредством взаимодействия DD-DD. Это активирует сигнальный путь, который приводит к транслокации NF-κB в ядро, где он индуцирует транскрипцию воспалительных цитокинов. FADD может вмешиваться во взаимодействие между MyD88 и IRAK, связываясь с MyD88 через его DD, и поэтому такое взаимодействие нарушает каскад, который может привести к транслокации NF-κB и воспалению[24][25].

Другие функцииПравить

FADD необходим для эффективного противовирусного ответа. При вирусной инфекции FADD необходим для повышения уровня молекул Irf7, необходимых для продукции IFN-α. IFN-α является ключевой молекулой, участвующей в ответной реакции против вирусов[26].

FADD участвует в активации фосфатаз, которые дефосфорилируют и дезактивируют протеинкиназу C (PKC). Без FADD PKC остаётся активной и способна продолжать сигнальные каскады, ведущие к процессам, включая перестройки цитоскелета и подвижность клеток[27].

Недавние исследования также показали, что FADD может играть роль в регулировании уровня глюкозы, и фосфорилированная форма FADD важна для этой функции[28].

РегуляцияПравить

 
Регуляция FADD с помощью MKRN1: MKRN1 убиквитинирует FADD, направляя его на деградацию протеосомой 26S. Поскольку происходит процесс убиквитинирования белка, то FADD больше не может связываться с рецептором Fas (FasR), чтобы вызвать апоптоз.

Субклеточная локализацияПравить

FADD может быть найден как в ядре, так и в цитоплазме клеток. Считается, что фосфорилирование остатка Ser194 FADD у людей (или Ser191 у мышей) регулирует его субклеточную локализацию. Последовательность ядерной локализации и сигнал ядерного экспорта, оба расположенные в DED FADD, также необходимы для того, чтобы он входил и выходил из ядра. В зависимости от своей субклеточной локализации, FADD может играть разные роли. В цитоплазме его основной функцией является индукция апоптоза. Тем не менее, в ядре, он может иметь противоположный эффект и вместо этого способствовать выживанию клеток.

c-FLIPПравить

Клеточный ингибиторный белок FLICE (c-FLIP) представляет собой регуляторный белок, который содержит два DED. Существует две изоформы C-FLIP: C-FLIPS и FLIPL. Первоначально считалось, что он действует как негативный регулятор апоптоза, связываясь с DED FADD и, следовательно, предотвращая связывание прокаспазы 8 и ингибируя образование DISC[29]. Однако, было замечено, что и c-FLIP, и прокаспаза 8 могут быть обнаружены в одном и том же комплексе DISC[30]. Поэтому было высказано предположение, что присутствие c-FLIP ингибирует тесное взаимодействие прокаспаз друг с другом. Без этой непосредственной близости прокаспазы не могут быть полностью расщеплены и остаются в неактивном состоянии[29].

PKCПравить

Активность протеинкиназы С оказывает негативное влияние на апоптоз, опосредованный рецептором Fas. Это потому, что она ингибирует рекрутирование FADD рецептора и, таким образом, DISC не образуется. Было показано, что при увеличении или уменьшении количества PKC в Т-клетках FADD рекрутируется FasR больше (усиленно) или меньше (ослаблено) соответственно, при стимуляции рецептора[31].

MKRN1Править

MKRN1 представляет собой E3-убиквитинлигазу, которая негативно регулирует FADD, направляя его на опосредованную убиквитином деградацию. При этом MKRN1 способен контролировать уровень апоптоза[32].

Роль в воспалительных заболеванияхПравить

Повышенные уровни FADD были обнаружены в лейкоцитах пациентов с рецидивирующим ремиттирующим рассеянным склерозом, способствующего воспалению. Предполагается, что при ревматоидном артрите стимуляция Fas-рецепторов на макрофагах приводит к образованию FADD-содержащих DISC. Образование этих FADD-секвестров вдали от MyD88, позволяет MyD88 взаимодействовать с IRAK и вызывать усиленное воспаление, связанное с данным заболеванием[33].

Роль в злокачественных опухоляхПравить

Поскольку FADD играет очень важную роль в апоптозе, потеря FADD может дать злокачественным клеткам пролиферативное преимущество, поскольку апоптоз больше не будет индуцироваться при стимуляции рецепторов Fas[25].

Тем не менее, существует значительная положительная регуляция FADD при раке яичников[34] и плоскоклеточном раке головы и шеи. Пока не ясно, какое преимущество это имеет для раковых клеток, но учитывая роль FADD в регуляции клеточного цикла и выживании клеток, вполне вероятно, что оно может быть связано с ней[35]. Существуют также повышенные уровни FADD при немелкоклеточном раке лёгких. FADD может использоваться в качестве прогнозируемых маркеров для обоих этих заболеваний, при этом высокий уровень FADD коррелирует с плохим исходом[36].

Терапевтическая цельПравить

Таксол является лекарственным средством, используемым в противоопухолевой терапии, вследствие его способности вмешиваться в сборку микротрубочек, что приводит к остановке клеточного цикла. Фосфорилированный по Ser194 FADD, делает клетки более чувствительными к остановке клеточного цикла, вызванной таксолом. Таксол также может вызывать апоптоз клеток, и для этого требуется прокаспаза 10, которая активируется путём рекрутирования в FADD[37].

Было показано, что активация JNK приводит к фосфорилированию FADD. Фосфорилированный FADD может вызывать остановку клеточного цикла G2/M, потенциально за счёт повышения стабильности p53. Следовательно, лекарства, которые могут активировать этот путь, могут иметь терапевтический потенциал[38]. Однако высокий уровень фосфорилированного FADD коррелирует с плохим прогнозом при многих злокачественных заболеваниях, таких как рак головы и шеи. Вероятно, это связано с активацией пути NF-κB, который является антиапоптотическим. Следовательно, ингибирование фосфорилирования FADD может развиваться как потенциальная противораковая стратегия[39]. Например, было высказано предположение, что ингибирование FADD может работать как потенциальная таргетная терапия лекарственно-устойчивого рака яичников[34].

ВзаимодействиеПравить

Было замечено, что FADD взаимодействует с рецептором Fas (FasR), а также со следующими белками:

ПримечанияПравить

  1. 1 2 3 GRCh38: Ensembl release 89: ENSG00000168040 - Ensembl, May 2017
  2. Human PubMed Reference:  (неопр.) National Center for Biotechnology Information, U.S. National Library of Medicine.
  3. Mouse PubMed Reference:  (неопр.) National Center for Biotechnology Information, U.S. National Library of Medicine.
  4. Kim, P.K.M.; Dutra, A.S.; Chandrasekharappa, S.C.; PUCK, J.M. Genomic structure and mapping of human FADD, an intracellular mediator of lymphocyte apoptosis (англ.) // Journal of Immunology  (англ.) (рус. : journal. — 1996. — Vol. 157, no. 12. — P. 5461—5466. — PMID 8955195.
  5. UniProt, Q13158 (англ.). Дата обращения: 19 октября 2019. Архивировано 25 августа 2017 года.
  6. Huang B., Eberstadt M., Olejniczak E. T., Meadows R. P., Fesik S. W. NMR structure and mutagenesis of the Fas (APO-1/CD95) death domain (англ.) // Nature : journal. — 1996. — Vol. 384, no. 6610. — P. 638—641. — doi:10.1038/384638a0. — PMID 8967952.
  7. 1 2 Eberstadt M., Huang B., Chen Z., Meadows R. P., Ng S. C., Zheng L., Lenardo M. J., Fesik S. W. NMR structure and mutagenesis of the FADD (Mort1) death-effector domain (англ.) // Nature : journal. — 1998. — Vol. 392, no. 6679. — P. 941—945. — doi:10.1038/31972. — PMID 9582077.
  8. 1 2 Boldin, M. P., Varfolomeev, E. E., Pancer, Z., Mett, I. L., Camonis, J. H. & Wallach, D. A Novel Protein That Interacts with the Death Domain of Fas/APO1 Contains a Sequence Motif Related to the Death Domain (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 1995. — Vol. 270, no. 14. — P. 7795—7798. — doi:10.1074/jbc.270.14.7795. — PMID 7536190.
  9. Jeong, E. J.; Bang, S.; Lee, T. H.; Park, Y. I.; Sim, W. S.; Kim, K. S. The solution structure of FADD death domain - Structural basis of death domain interactions of Fas and FADD (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 1999. — Vol. 274, no. 23. — P. 16337—16342. — doi:10.1074/jbc.274.23.16337. — PMID 10347191.
  10. Boldin, M. P.; Goncharov, T. M.; Goltsev, Y. V.; wallach, D. Involvement of MACH, a novel MORT1/FADD-interacting protease, in Fas/APO-1- and TNF receptor-induced cell death (англ.) // Cell : journal. — Cell Press, 1996. — Vol. 85, no. 6. — P. 803—815. — doi:10.1016/s0092-8674(00)81265-9. — PMID 8681376.
  11. 1 2 3 Kischkel F. C., Lawrence D. A., Tinel A., LeBlanc H., Virmani A., Schow P., Gazdar A., Blenis J., Arnott D., Ashkenazi A. Death receptor recruitment of endogenous caspase-10 and apoptosis initiation in the absence of caspase-8 (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 2001. — Vol. 276, no. 49. — P. 46639—46646. — doi:10.1074/jbc.M105102200. — PMID 11583996.
  12. Weinlich R., Dillon C. P., Green D. R. Ripped to death (англ.) // Trends in Cell Biology  (англ.) (рус. : journal. — Cell Press, 2011. — Vol. 21, no. 11. — P. 630—637. — doi:10.1016/j.tcb.2011.09.002. — PMID 21978761.
  13. 1 2 3 4 Lee, E.-W.; Seo, J.; Jeong, M.; Lee, S.; Song, J. The roles of FADD in extrinsic apoptosis and necroptosis (англ.) // BMB Reports : journal. — 2012. — Vol. 45, no. 9. — P. 496—508. — doi:10.5483/BMBRep.2012.45.9.186. — PMID 23010170.
  14. 1 2 Bodmer J. L., Holler N., Reynard S., Vinciguerra P., Schneider P., Juo P., Blenis J., Tschopp J. TRAIL receptor-2 signals apoptosis through FADD and caspase-8 (англ.) // Nature Cell Biology : journal. — 2000. — Vol. 2, no. 4. — P. 241—243. — doi:10.1038/35008667. — PMID 10783243.
  15. 1 2 Micheau, O.; Tschopp, J. Induction of TNF receptor I-mediated apoptosis via two sequential signaling complexes (англ.) // Cell : journal. — Cell Press, 2003. — Vol. 114, no. 2. — P. 181—190. — doi:10.1016/s0092-8674(03)00521-x. — PMID 12887920.
  16. 1 2 Pyo J. O., Jang M. H., Kwon Y. K., Lee H. J., Jun J. I., Woo H. N., Cho D. H., Choi B., Lee H., Kim J. H., Mizushima N., Oshumi Y., Jung Y. K. Essential roles of Atg5 and FADD in autophagic cell death - Dissection of autophagic cell death into vacuole formation and cell death (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 2005. — Vol. 280, no. 21. — P. 20722—20729. — doi:10.1074/jbc.M413934200. — PMID 15778222.
  17. Bell B. D., Leverrier S., Weist B. M., Newton R. H., Arechiga A. F., Luhrs K. A., Morrissette N. S., Walsh C. M. . FADD and caspase-8 control the outcome of autophagic signaling in proliferating T cells (англ.) // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America : journal. — 2008. — Vol. 105, no. 43. — P. 16677—16682. — doi:10.1073/pnas.0808597105. — PMID 18946037.
  18. Yeh, W. C.; De La Pompa, J. L.; Mccurach, M. E.; Shu, H. B.; Elia, A. J.; Shahinian, A.; Ng, M.; Wakeham, A.; Khoo, W.; Mitchell, K.; El-Deiry, W. S.; Lowe, S. W.; Goeddel, D. V.; Mak, T. W. FADD: Essential for embryo development and signaling from some, but not all, inducers of apoptosis (англ.) // Science : journal. — 1998. — Vol. 279, no. 5358. — P. 1954—1958. — doi:10.1126/science.279.5358.1954. — PMID 9506948.
  19. Sakamaki K., Takagi C., Kitayama A., Kurata T., Yamamoto T. S., Chiba K., Kominami K., Jung S. K., Okawa K., Nozaki M., Kubota H. Y., Ueno N. Multiple functions of FADD in apoptosis, NF-kappa B-related signaling, and heart development in Xenopus embryos (англ.) // Genes to Cells  (англ.) (рус. : journal. — 2012. — Vol. 17, no. 11. — P. 875—896. — doi:10.1111/gtc.12004. — PMID 23025414.
  20. Gregory-Evans C. Y., Moosajee M., Hodges M. D., Mackay D. S., Game L., Vargesson N., Bloch-Zupan A., Rüschendorf F., Santos-Pinto L., Wackens G., Gregory-Evans K. SNP genome scanning localizes oto-dental syndrome to chromosome 11q13 and microdeletions at this locus implicate FGF3 in dental and inner-ear disease and FADD in ocular coloboma (англ.) // Human Molecular Genetics  (англ.) (рус. : journal. — Oxford University Press, 2007. — Vol. 16, no. 20. — P. 2482—2493. — doi:10.1093/hmg/ddm204. — PMID 17656375.
  21. 1 2 Alappat E. C., Feig C., Boyerinas B., Volkland J., Samuels M., Murmann A. E., Thorburn A., Kidd V. J., Slaughter C. A., Osborn S. L., Winoto A., Tang W. J., Peter M. E. Phosphorylation of FADD at serine 194 by CKI alpha regulates its nonapoptotic activities (англ.) // Molecular Cell  (англ.) (рус. : journal. — 2005. — Vol. 19, no. 3. — P. 321—332. — doi:10.1016/j.molcel.2005.06.024. — PMID 16061179.
  22. Zhang J., Cado D., Chen A., Kabra N. H., Winoto A. Fas-mediated apoptosis and activation-induced T-cell proliferation are defective in mice lacking FADD/Mort1 (англ.) // Nature : journal. — 1998. — Vol. 392, no. 6673. — P. 296—300. — doi:10.1038/32681. — PMID 9521326.
  23. Vander Elst P., van den Berg E., Pepermans H., vander Auwera L., Zeeuws R., Tourwe D., van Binst G. The Fas-associated death domain protein is required in apoptosis and TLR-induced proliferative responses in B cells (англ.) // Journal of Immunology  (англ.) (рус. : journal. — 2006. — Vol. 176, no. 11. — P. 6852—6861. — doi:10.4049/jimmunol.176.11.6852. — PMID 16709845.
  24. Wajant H., Haas E., Schwenzer R., Muhlenbeck F., Kreuz S., Schubert G., Grell M., Smith C., Scheurich P. Inhibition of death receptor-mediated gene induction by a cycloheximide-sensitive factor occurs at the level of or upstream of Fas-associated death domain protein (FADD) (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 2000. — Vol. 275, no. 32. — P. 24357—24366. — doi:10.1074/jbc.M000811200. — PMID 10823821.
  25. 1 2 3 Tourneur L., Chiocchia G. FADD: a regulator of life and death (англ.) // Trends in Immunology  (англ.) (рус. : journal. — Cell Press, 2010. — Vol. 31, no. 7. — P. 260—269. — doi:10.1016/j.it.2010.05.005. — PMID 20576468.
  26. Balachandran, S.; Venkataraman, T.; Fisher, P. B.; Barber, G. N. Fas-associated death domain-containing protein-mediated antiviral innate immune signaling involves the regulation of Irf7 (англ.) // Journal of Immunology  (англ.) (рус. : journal. — 2007. — Vol. 178, no. 4. — P. 2429—2439. — doi:10.4049/jimmunol.178.4.2429. — PMID 17277150.
  27. Cheng W., Wang L., Zhang R., Du P., Yang B., Zhuang H., Tang B., Yao C., Yu M., Wang Y., Zhang J., Yin W., Li J., Zheng W., Lu M., Hua Z. Regulation of Protein Kinase C Inactivation by Fas-associated Protein with Death Domain (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 2012. — Vol. 287, no. 31. — P. 26126—26135. — doi:10.1074/jbc.M112.342170. — PMID 22582393.
  28. Yao C., Zhuang H., Du P., Cheng W., Yang B., Guan S., Hu Y., Zhu D., Christine M., Shi L., Hua Z. C. Domain-containing Protein (FADD) Phosphorylation in Regulating Glucose Homeostasis: from Proteomic Discovery to Physiological Validation (англ.) // Molecular & Cellular Proteomics : journal. — 2013. — Vol. 12, no. 10. — P. 2689—2700. — doi:10.1074/mcp.M113.029306. — PMID 23828893.
  29. 1 2 Krueger A., Baumann S., Krammer P. H., Kirchhoff S. FLICE-inhibitory proteins: Regulators of death receptor-mediated apoptosis (англ.) // Molecular and Cellular Biology  (англ.) (рус. : journal. — 2001. — Vol. 21, no. 24. — P. 8247—8254. — doi:10.1128/mcb.21.24.8247-8254.2001. — PMID 11713262.
  30. 1 2 Scaffidi, C.; Schmitz, I.; Krammer, P. H.; Peter, M. E. The role of c-FLIP in modulation of CD95-induced apoptosis (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 1999. — Vol. 274, no. 3. — P. 1541—1548. — doi:10.1074/jbc.274.3.1541. — PMID 9880531.
  31. Gómez-Angelats M., Cidlowski J. A. Protein kinase C regulates FADD recruitment and death-inducing signaling complex formation in Fas/CD95-induced apoptosis (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 2001. — Vol. 276, no. 48. — P. 44944—44952. — doi:10.1074/jbc.M104919200. — PMID 11581255.
  32. 1 2 Lee E. W., Kim J. H., Ahn Y. H., Seo J., Ko A., Jeong M., Kim S. J., Ro J. Y., Park K. M., Lee H. W., Park E. J., Chun K. H., Song J. Ubiquitination and degradation of the FADD adaptor protein regulate death receptor-mediated apoptosis and necroptosis (англ.) // Nature Communications : journal. — Nature Publishing Group, 2012. — Vol. 3. — P. 978. — doi:10.1038/ncomms1981. — PMID 22864571.
  33. Ma Y., Liu H., Tu-Rapp H., Thiesen H. J., Ibrahim S. M., Cole S. M., Pope R. M. Fas ligation on macrophages enhances IL-1R1-Toll-like receptor 4 signaling and promotes chronic inflammation (англ.) // Nature Immunology : journal. — 2004. — Vol. 5, no. 4. — P. 380—387. — doi:10.1038/ni1054. — PMID 15004557.
  34. 1 2 Razaghi, Ali; Villacrés, Carina; Jung, Vincent; Mashkour, Narges; Butler, Michael; Owens, Leigh; Heimann, Kirsten. Improved therapeutic efficacy of mammalian expressed-recombinant interferon gamma against ovarian cancer cells (англ.) // Experimental Cell Research  (англ.) (рус. : journal. — 2017. — Vol. 359, no. 1. — P. 20—29. — doi:10.1016/j.yexcr.2017.08.014.
  35. Pattje W. J., Melchers L. J., Slagter-Menkema L., Mastik M. F., Schrijvers M. L., Gibcus J. H., Kluin P. M., Hoegen-Chouvalova O., van der Laan B. F., Roodenburg J. L., van der Wal J. E., Schuuring E., Langendijk J. A. FADD expression is associated with regional and distant metastasis in squamous cell carcinoma of the head and neck (англ.) // Histopathology  (англ.) (рус. : journal. — Wiley-Blackwell, 2013. — Vol. 63, no. 2. — P. 263—270. — doi:10.1111/his.12174. — PMID 23763459.
  36. Cimino Y., Costes A., Damotte D., Validire P., Mistou S., Cagnard N., Alifano M., Régnard J. F., Chiocchia G., Sautès-Fridman C., Tourneur L. FADD protein release mirrors the development and aggressiveness of human non-small cell lung cancer (англ.) // British Journal of Cancer  (англ.) (рус. : journal. — 2012. — Vol. 106, no. 12. — P. 1989—1996. — doi:10.1038/bjc.2012.196. — PMID 22669160.
  37. Park S. J., Wu C. H., Gordon J. D., Zhong X., Emami A., Safa A. R. Taxol induces caspase-10-dependent apoptosis (англ.) // Journal of Biological Chemistry : journal. — 2004. — Vol. 279, no. 49. — P. 51057—51067. — doi:10.1074/jbc.M406543200. — PMID 15452117.
  38. Matsuyoshi S., Shimada K., Nakamura M., Ishida E., Konishi N. FADD phosphorylation is critical for cell cycle regulation in breast cancer cells (англ.) // British Journal of Cancer  (англ.) (рус. : journal. — 2006. — Vol. 94, no. 4. — P. 532—539. — doi:10.1038/sj.bjc.6602955. — PMID 16450001.
  39. Schinske K. A., Nyati S., Khan A. P., Williams T. M., Johnson T. D., Ross B. D., Tomás R. P., Rehemtulla A. A Novel Kinase Inhibitor of FADD Phosphorylation Chemosensitizes through the Inhibition of NF-kappa B (англ.) // Molecular Cancer Therapeutics : journal. — 2011. — Vol. 10. — P. 1807—1817. — doi:10.1158/1535-7163.mct-11-0362. — PMID 21859840.
  40. Buechler C., Bared S. M., Aslanidis C., Ritter M., Drobnik W., Schmitz G. Molecular and functional interaction of the ATP-binding cassette transporter A1 with Fas-associated death domain protein (англ.) // J. Biol. Chem. : journal. — 2002. — November (vol. 277, no. 44). — P. 41307—41310. — doi:10.1074/jbc.C200436200. — PMID 12235128.
  41. Roth W., Stenner-Liewen F., Pawlowski K., Godzik A., Reed J. C. Identification and characterization of DEDD2, a death effector domain-containing protein (англ.) // J. Biol. Chem. : journal. — 2002. — March (vol. 277, no. 9). — P. 7501—7508. — doi:10.1074/jbc.M110749200. — PMID 11741985.
  42. Screaton R. A., Kiessling S., Sansom O. J., Millar C. B., Maddison K., Bird A., Clarke A. R., Frisch S. M. Fas-associated death domain protein interacts with methyl-CpG binding domain protein 4: a potential link between genome surveillance and apoptosis (англ.) // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America : journal. — 2003. — April (vol. 100, no. 9). — P. 5211—5216. — doi:10.1073/pnas.0431215100. — PMID 12702765.
  43. Stilo R., Liguoro D., di Jeso B., Leonardi A., Vito P. The alpha-chain of the nascent polypeptide-associated complex binds to and regulates FADD function (англ.) // Biochem. Biophys. Res. Commun.  (англ.) (рус. : journal. — 2003. — April (vol. 303, no. 4). — P. 1034—1041. — doi:10.1016/s0006-291x(03)00487-x. — PMID 12684039.
  44. Condorelli G., Vigliotta G., Cafieri A., Trencia A., Andalò P., Oriente F., Miele C., Caruso M., Formisano P., Beguinot F. PED/PEA-15: an anti-apoptotic molecule that regulates FAS/TNFR1-induced apoptosis (англ.) // Oncogene  (англ.) (рус. : journal. — 1999. — August (vol. 18, no. 31). — P. 4409—4415. — doi:10.1038/sj.onc.1202831. — PMID 10442631.

См. такжеПравить